Créditos ECTS Créditos ECTS: 6
Horas ECTS Criterios/Memorias Trabajo del Alumno/a ECTS: 99 Horas de Tutorías: 3 Clase Expositiva: 24 Clase Interactiva: 24 Total: 150
Lenguas de uso Castellano, Gallego
Tipo: Materia Ordinaria Grado RD 1393/2007 - 822/2021
Departamentos: Microbiología y Parasitología
Áreas: Microbiología, Parasitología
Centro Facultad de Farmacia
Convocatoria: Segundo semestre
Docencia: Sin docencia (Extinguida)
Matrícula: No matriculable
La materia Análisis Microbiológico y Parasitológico incluye contenidos mínimos de formación, adquisición de competencias y habilidades que el alumno debe conocer respecto a la toma, transporte y procesamiento de muestras para el diagnóstico de enfermedades infecciosas y para la detección y/o identificación de microorganismos patógenos para el ser humano y animales o que suponen un riesgo ambiental y alimentario.
• TEMA 1. El laboratorio de análisis clínico. Organización y procedimientos generales. Bioseguridad: categorías de riesgo biológico y niveles de contención. Normas de seguridad e higiene. Conceptos generales sobre la recogida, transporte, almacenamiento y manipulación de material biológico. Eliminación de residuos infecciosos. Control de Calidad: métodos y áreas de control.
• TEMA 2. Técnicas de diagnóstico bacteriológico. Examen de muestras en fresco y teñidas. Aislamiento y cultivo de bacterias. Métodos microbiológicos convencionales para la identificación bacteriana. Sistemas de identificación comerciales. Sistemas automatizados.
• TEMA 3. Técnicas de diagnóstico micológico. Examen de muestras en fresco y teñidas. Aislamiento y cultivo de hongos. Métodos microbiológicos convencionales para la identificación de hongos. Sistemas de identificación comerciales.
• TEMA 4. Técnicas de diagnóstico virológico. Detección directa. Citología e histología. Microscopía electrónica. Aislamiento viral. Caracterización de los virus. Efecto citopático. Cuerpos de inclusión. Hemaglutinación viral. Determinación de la dosis infecciosa en cultivo de tejidos. Ensayos de placas y de transformación.
• TEMA 5. Diagnóstico inmunológico de las enfermedades infecciosas. Detección de antígenos en muestras clínicas. Técnicas inmunológicas para la identificación de microorganismos. Serodiagnóstico de las enfermedades infecciosas. Objetivos, métodos e interpretación de las pruebas serológicas.
• TEMA 6. Técnicas moleculares aplicadas al diagnóstico microbiológico. Análisis cromatográfico de ácidos grasos. Electroforesis de proteínas. Secuenciación de ácidos nucleicos. Hibridación de los ácidos nucleicos. Amplificación de ácidos nucleicos mediante la reacción en cadena de la polimerasa.
• TEMA 7. Obtención y procesado de muestras de alimentos y aguas para análisis microbiológico. Muestras de alimentos. Recuento de mesófilos totales. Indicadores de falta de higiene. Investigación de patógenos. Análisis de manipuladores. Muestras de agua. Recuento de aerobios mesófilos. Indicadores de contaminación fecal. Sistemas rápidos de detección de indicadores y patógenos.
• TEMA 8. Obtención y procesado de muestras ambientales para análisis microbiológico. Estrategias de muestreo ambiental. Análisis de muestras de aire: sedimentación y filtración. Análisis de superficies por placas de contacto, lengüetas y método del hisopo.
• TEMA 9. Diagnóstico de las infecciones de piel, tejidos blandos y heridas. Obtención, transporte y conservación de las muestras. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
• TEMA 10. Diagnóstico de las infecciones de ojos y oídos. Estudio microbiológico de exudados conjuntival y ótico. Obtención de muestras. Examen directo de muestras teñidas. Técnicas inmunológicas. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
• TEMA 11. Diagnóstico de las infecciones urinarias. Obtención, transporte y conservación de las muestras. Examen microscópico de muestras de sedimento en fresco y teñidas. Pruebas indirectas. Urocultivo. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados. La orina en la detección de antígenos.
• TEMA 12. Diagnóstico de infecciones gastrointestinales. Obtención, transporte y conservación de las muestras. Examen de muestras de heces en fresco y teñidas. Coprocultivo. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados. Técnicas de detección de antígenos.
• TEMA 13. Diagnóstico de las infecciones respiratorias. Obtención, transporte y procesado de muestras de exudado nasofaríngeo y de esputo. Examen microscópico de muestras teñidas. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados. Detección de antígenos y diagnóstico serológico. Amplificación de ácidos nucleicos.
• TEMA 14. Estudio microbiológico de exudados uretrales y vaginales. Obtención de las muestras. Examen microscópico de muestras teñidas. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
• TEMA 15. Estudio microbiológico de líquido cefalorraquídeo y sangre. Obtención de las muestras. Examen microscópico de muestras teñidas. Protocolo de estudio microbiológico e interpretación de los resultados.
• TEMA 16. Análisis de la sensibilidad a agentes antimicrobianos. Sensibilidad a agentes antibacterianos y antifúngicos. Métodos de difusión y dilución. Sistemas comerciales. Métodos alternativos para la detección de resistencias. Sensibilidad a agentes antivirales: ensayo de reducción de placas. Detección de agentes antimicrobianos en fluidos biológicos y tejidos.
• TEMA 17. El diagnóstico en Parasitología. Importancia de la historia clínica en el análisis parasitológico.
• TEMA 18. Coprología parasitaria I. Formas parasitarias presentes en heces. Procedimientos de obtención y conservación de las muestras. Examen macroscópico. Examen microscópico. Técnicas de concentración. Técnicas cuantitativas. Tinciones. Elementos no parasitarios de las heces. Interpretación de resultados.
• TEMA 19. Coprología parasitaria II. Métodos de concentración de larvas en heces. Coprocultivo de helmintos y protozoos. Métodos específicos para el diagnóstico de la enterobiosis.
• TEMA 20. Coprología parasitaria III. Aplicación de métodos inmunológicos y moleculares.
• TEMA 21. Examen parasitológico de muestras del tracto genitourinario: orina, exudado vaginal/uretral, secreción prostática. Diagnóstico de laboratorio de la trichomonosis. Diagnóstico de laboratorio de la schistosomosis vesical.
• TEMA 22. Hematología parasitaria I. Formas parasitarias presentes en sangre. Obtención de muestras. Examen en fresco. Examen de preparaciones teñidas: frotis fino y gota gruesa. Examen de sangre y métodos alternativos en el diagnóstico de parasitosis hemotisulares: malaria, filariosis, trypanosomosis y leishmaniosis.
• TEMA 23. Hematología parasitaria II. Aplicación de métodos inmunológicos y moleculares. Metodología en el diagnóstico de toxoplasmosis, cisticercosis, hidatidosis y trichinellosis. Interpretación de resultados.
• TEMA 24. Parásitos presentes en otras muestras biológicas. Examen de esputo. Examen de aspirados: bronquial, duodenal y hepático. Examen de líquido cefalorraquídeo, líquido ganglionar, médula ósea, piel y otros tejidos.
• TEMA 25. Parásitos presentes en muestras de agua, alimentos, y ambientales. Métodos de concentración e identificación.
Programa de clases prácticas:
MICROBIOLOGÍA:
Práctica 1. Análisis microbiológico de orina. Examen de sedimento y Tinción GRAM. Urocultivo cuantitativo y cualitativo.
Práctica 2. Análisis microbiológico de exudados ótico y vaginal. Identificación de formas fúngicas: examen de muestras en fresco y teñidas.
Práctica 3.- Análisis microbiológico del aire y de superficies. Valoración de la eficacia de agentes químicos para la desinfección de superficies.
Practica 4.- Estudio de la sensibilidad a antimicrobianos. Métodos de dilución y difusión. Determinación de la concentración mínima inhibitoria y microbicida.
PARASITOLOGÍA:
Práctica 1. Coprología parasitaria: Examen macroscópico. Técnicas de examen directo. Técnicas coprológicas de concentración. Identificación de formas parasitarias al microscopio. Técnica de Graham para el diagnóstico de la enterobiosis. Método de Baerman para el aislamiento de larvas de nematodos.
Práctica 2. Hematología parasitaria: Identificación microscópica de formas parasitarias en preparaciones teñidas de sangre. Identificación microscópica de formas parasitarias tisulares. . Determinación de formas parasitarias en muestras ambientales.
Básica
• Forbes, B.A., Sahm, D. F., Weissfeld, A. S. Diagnóstico Microbiológico (Bailey & Scott), 12a Ed., Editorial Médica Panamericana, 2009.
• Gillespie, S.H. Hawkey, P.M. 1995. Medical Parasitology: a práctical aproach. Ed. Oxford University Press, USA, 1º Ed., 1995.
. Brooks, G. F., Carrol, K. C., Butel, J. S., Morse, S. A., Miettzner,T.A. Microbiología médica. McGraw Hill Lange. (25th edition). 2010. (http://redlagrey.com/files/Microbiologia_Medica_Jawetz_25_www.rinconmed…)
Complementaria
• AAPF (American Academy of Family Physicians). Atlas de Microscopía Clínica. 4ª Ed. Editorial Médica Panamericana.2015.
• Alvarez, M.V., E. Boquet, I. De Fez. Manual de técnicas en Microbiología Clínica. 2ª Ed. AEFA, 1990.
• Gamazo, C., I. López-Goñi y R. Díaz. Manual práctico de Microbiología. 3ª Ed. Masson, 2005.
• García, S. Lynne. Diagnostic medical parasitology. ASM Press, Washington, D.C. 6ªEd. 2016
• http://dpd.cdc.gov/dpdx/Default.htm. DPDx Laboratory identification of parasites of public health concern.
• https://www.seimc.org/documentos-cientificos/procedimientos-microbiolog…
• Murray, Patrick R., Ellen Jo Baron, James H. Jorgensen, Marie Louise Landry, and Michael A. Pfaller. Manual of Clinical Microbiology, 9º Ed. Washington, DC: ASM Press, 2007.
• OMS. Métodos básicos en el laboratorio en Parasitología Médica, 1992.
• Prats, G. 2012. Microbiología y Parasitología Médicas. Madrid: Editorial Médica Panamericana..
• Prats, G. Microbiología Clínica y Parasitología Médicas. Ed. Panamericana, 2013.
• Shors, Teri . Virus. Estudio molecular con orientación clínica. Ed. Médica Panamericana, 2009.
Competencias generales.
• Diseñar, aplicar y evaluar reactivos, métodos y técnicas analíticas clínicas, conociendo los fundamentos básicos de los análisis clínicos y las características y contenidos de los dictámenes de diagnóstico de laboratorio.
• Desarrollar análisis higiénico-sanitarios, especialmente los relacionados con los alimentos y medioambiente.
Competencias específicas.
• MF02 Conocer y comprender los fundamentos básicos de los análisis clínicos y las características y contenidos de los dictámenes del diagnóstico de laboratorio.
• MF03 Desarrollar análisis higiénico-sanitarios (microbiológicos y parasitológicos) relacionados con la salud en general y con los alimentos y medio ambiente en particular.
• MF14 Conocer las Técnicas analíticas relacionadas con diagnóstico de laboratorio, tóxicos, alimentos y medioambiente.
Competencias transversales.
• CI03 Conocimientos generales básicos.
• CI09 Resolución de problemas.
• CS01 Capacidad de aplicar los conocimientos en la práctica.
La docencia contará de las siguientes actividades formativas:
• Las clases expositivas serán impartidas de forma presencial (escenario 1) y de forma telemática sincrónica (campus virtual-Moodle y Ms Teams) (escenarios 2 y 3). Las clases expositivas consistirán en lecciones magistrales impartidas por el profesor/a, de forma presencial o telemática, con apoyo de diverso material informático. El alumno dispondrá en el aula virtual de material complementario para el estudio y preparación de la materia.
• Clases prácticas de laboratorio: son obligatorias para superar la materia. Se incluyen aquí las clases que tengan lugar en su totalidad en el laboratorio de prácticas (escenario 1), las impartidas de forma combinada presencial y virtual (escenario 2) y las impartidas en su totalidad de forma virtual (escenario 3). Una vez realizadas las prácticas, éstas serán válidas en 2 cursos académicos posteriores.
• Tutorías: Se programarán por el profesor a demanda de los alumnos. Se proponen actividades como, aclaración de dudas sobre teoría, prácticas o lecturas.
Para la evaluación del aprendizaje se establece:
Evaluación continua mediante la realización de cuestionarios a lo largo del cuatrimestre (40% de la calificación) y una prueba final específica complementaria a la evaluación continua (60% de la calificación), ambas de carácter obligatorio.
• La evaluación continua y la prueba final específica constarán de dos partes diferenciadas para la sección de Microbiología y la de Parasitología. Esta supondrá un 60% de la calificación para el área de Microbiología y un 40% para el área de Parasitología. No obstante para superar la materia es imprescindible superar ambas partes. Si se aprueba sólo una parte, el aprobado se conservará únicamente en el mismo curso académico.
• La prueba final constará de preguntas tipo test, preguntas de respuesta breve y/o casos prácticos. En dicha prueba, serán también objeto de evaluación los conocimientos adquiridos en las clases prácticas de laboratorio. En la segunda oportunidad extraordinaria de julio se utilizarán los mismos criterios de evaluación que en la primera. La prueba final de la materia se realizará de forma presencial o por vía telemática en función de la situación sanitaria existente en ese momento.
• Para los casos de realización fraudulenta de ejercicios o pruebas será de aplicación lo recogido en la Normativa de evaluación del rendimiento académico de los estudiantes y de revisión de calificaciones.
Clases expositivas: 60h
Tutorías: 2h
Prácticas de laboratorio: 27 h
Cuestionarios de evaluación continua: 4h
Prueba final y revisión: 2h
• Se recomienda llevar la materia al día para un mejor aprovechamiento de la misma, la asistencia a las clases expositivas, una dedicación regular, no avanzar sin entender y conocer la materia anterior, utilizar la plataforma virtual como complemento, consultar la bibliografía, utilizar las horas de tutorías para resolver las dudas y leer el guión de prácticas antes de acudir a realizarlas.
Se recogen las adaptaciones correspondientes a la metodología de enseñanza en el siguiente Plan de Contingencia para el curso 2020-21.
Escenario 1
Expositivas: Presencial en el aula
Tutorías: Presencial en el aula
Prácticas: 100% prácticas presenciales en laboratorio
Escenario 2
Expositivas: Docencia telemática sincrónica
Tutorías: Presencial en el aula
Prácticas: 50% prácticas presenciales en laboratorio y 50% asincrónicas virtuales.
Escenario 3
Expositivas y Tutorías: Docencia telemática sincrónica/asincrónica
Prácticas: 100% prácticas virtuales (sincrónica/asincrónica o una combinación de ambas)
Para aquellos escenarios que no permitan la presencialidad, la comunicación profesor/alumno continuará mediante correo electrónico, aula virtual (foro, chat) y MS Teams.
Maria Isabel Santos Rodriguez
Coordinador/a- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Microbiología
- Teléfono
- 881816028
- Correo electrónico
- ysabel.santos [at] usc.es
- Categoría
- Profesor/a: Catedrático/a de Universidad
Maria Esperanza Paniagua Crespo
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Parasitología
- Teléfono
- 881815004
- Correo electrónico
- mesperanza.paniagua [at] usc.es
- Categoría
- Profesor/a: Titular de Universidad
Maria Angeles Muñoz Crego
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Microbiología
- Teléfono
- 881816909
- Correo electrónico
- a.munoz.crego [at] usc.es
- Categoría
- Profesor/a: Titular de Universidad
Mª Concepcion Sainz Rivadulla
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Microbiología
- Correo electrónico
- mconcepcion.sainz [at] usc.es
- Categoría
- Profesor/a: Titular de Universidad
Fernanda Romaris Martinez
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Parasitología
- Teléfono
- 881815247
- Correo electrónico
- fernanda.romaris [at] usc.es
- Categoría
- Profesor/a: Titular de Universidad
Sabela Balboa Mendez
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Microbiología
- Correo electrónico
- sabela.balboa [at] usc.es
- Categoría
- Investigador/a: JIN (Jóvenes Investigadores)
Sabela Balboa Mendez
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Microbiología
- Correo electrónico
- sabela.balboa [at] usc.es
- Categoría
- Investigador/a Distinguido/a
Miguel Balado Dacosta
- Departamento
- Microbiología y Parasitología
- Área
- Microbiología
- Correo electrónico
- miguel.balado [at] usc.es
- Categoría
- Investigador/a: JIN (Jóvenes Investigadores)
| Martes | |||
|---|---|---|---|
| 09:00-10:00 | Grupo B/CLE_02 | Castellano | 5035 Aula 6 Facultad Derecho |